ОХНМЖурнал органической химии Russian Journal of Organic Chemistry

  • ISSN (Print) 0514-7492
  • ISSN (Online) 3034-6304

СИНТЕЗ (3aS,4aS,6aR)-2-ОКСО-3,3a,4,6a-ТЕТРАГИДРО-2H-ЦИКЛОПЕНТА[b]ФУРАН-4-ИЛАЦЕТАТА - КЛЮЧЕВОГО СИНТОНА В ПОДХОДАХ К (-)-ГАЛИЕЛЛАЛАКТОНУ

Код статьи
S30346304S0514749225020062-1
DOI
10.7868/S3034630425020062
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 61 / Номер выпуска 2
Страницы
167-171
Аннотация
Синтезирован бициклический аллиловый ацетат - перспективный предшественник (-)-галиелла-лактона. Метод основан на разделении диастереомерных карбоксамидов, полученных амидированием рацемического гемдихлорзамещенного лактона Грико (+)-α-метилбензиламином. Последующие стадии превращений индивидуального диастереомера включают реакции исчерпывающего восстановительного дехлорирования, построения аллильного спиртового фрагмента в кольцевой части в результате стерео- и региоспецифичной реакции бромгидроксилилирования действием NBS в водном ТГФ и дегидробромирования.
Ключевые слова
бициклические γ-лактоны галиеллалактоны бромгидроксилирование галои-минолактонизация (+)-α-метилбензиламин лактон Грико
Дата публикации
13.10.2024
Год выхода
2024
Всего подписок
0
Всего просмотров
21

Библиография

  1. 1. Hautzel R., Anke H. Naturforsch. 1990, 45, 1093-1098. doi 10.18632/oncotarget.6606
  2. 2. Koepcke B., Johansson M., Sterner O., Anke H. J. Antibiot. 2002, 55, 36-40. doi 10.7164/antibiotics.55.36
  3. 3. Escobar Z., Williams H., Phipps R., Karunakaran D., Steele J., Sterner O. Phytochem. Lett. 2015, 12, 138-141. doi 10.1016/j.phytol.2015.03.009
  4. 4. Canesin G., Maggio V., Palominos M., Stiehm A., Contreras H.R., Castellón E.A., Morote J., Paciucci R., Maitland N.J., Bjartell A., Hellsten R. Sci. Rep. 2020, 10, 1-12. doi 10.1038/s41598-020-70948-5
  5. 5. Hellsten R., Johansson M., Dahlman A., Sterner O., Bjartell A. PLoS One. 2011, 6, e22118. doi 10.1371/journal.pone.0022118
  6. 6. Rudolph K., Serwe A., Erkel G. Cytokine. 2013, 61, 285-296. doi 10.1016/j.cyto.2012.10.011
  7. 7. Zhang Q., Feng Y., Kennedy D. Cell. Mol. Life Sci. 2017, 74, 777-801. doi 10.1007/s00018-016-2362-3
  8. 8. Hausding M., Tepe M., Übel C., Lehr H.A., Röhrig B., Höhn Y., Pautz A., Eigenbrod T., Anke T., Kleinert H., Erkel G., Finotto S.Int. Immunol. 2011, 23, 1-15. doi 10.1093/intimm/dxq451
  9. 9. Bollmann F., Jäckel S., Schmidtke L., Schrick K., Reinhardt C., Jurk K., Wu Z., Xia N., Li H., Erkel G., Walter U., Kleinert H., Pautz A. PLoS One. 2015, 10, e0130401. doi 10.1371/journal.pone.0130401
  10. 10. Pérez M., Soler-Torronteras R., Collado J.A., Limones C.G., Hellsten R., Johansson M., Sterner O., Bjartell A., Calzado M.A., Muñoz E. Chem. Biol.Interact. 2014, 214, 69-76. doi 10.1016/j.cbi.2014.02.012
  11. 11. Garrido-Rodríguez M., Ortea I., Calzado M.A., Muñoz E., García V. J. Proteomics. 2019, 193, 217-229. doi 10.1016/j.jprot.2018.10.012
  12. 12. Gimazetdinov A.M., Vostrikov N.S., Miftakhov M.S. Tetrahedron: Asymmetry. 2008, 19, 1094-1099. doi 10.1016/j.tetasy.2008.04.001
  13. 13. Loza V.V., Valiullina Z.R., Miftakhov M.S.Russ. Chem. Bull. 2021, 70, 1-31. doi 10.1007/s11172-021-3052-3
  14. 14. Valiullina Z.R., Akhmetyanova V.A., Ivanova N.A., Miftakhov M.S. Tetrahedron Lett. 2015, 56, 6904-6907. doi 10.1016/j.tetlet.2015.10.106
  15. 15. Tello-Aburto R., Rios M.Y., Swenson D.C., Olivo H.F. Tetrahedron Lett. 2008, 49, 6853-6855. doi 10.1016/j.tetlet.2008.09.081
  16. 16. Johansson M., Sterner O. Org. Lett. 2001, 3, 2843-2845. doi 10.1021/ol016286+
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека